throbber
(12) NACH DEM VERTRAG UBER DIE INTERNATIONALE ZUSAMMENARBEIT AUF DEM GEBIET DES
`PATENTWESENS (PCT) VEROFFENTLICHTE INTERNATIONALE ANMELDUNG
`
` .,
`
`(10) Internationale Veroffentlichungsnummer
`
`WO 2007/096387 A1
`
`(19) Weltorganisation fiir geistiges Eigentum
`Internationales Bfiro
`
`(43) Internationales Veroffentlichungsdatum
`30. August 2007 (30.08.2007)
`
`(51) Internationale Patentklassifikation:
`CIZN 15/82 (2006.01)
`
`(21) Internationales Aktenzeichen:
`
`PCT/EP2007/05 1675
`
`(22) Internationales Anmeldedatum:
`21. Februar 2007 (21.02.2007)
`
`(25) Einreichungssprache:
`
`(26) Veroffentlichungssprache:
`
`(30) Angaben zur Prioritat:
`10 2006 008 030.0
`
`Deutsch
`
`Deutsch
`
`061203097
`
`21. Februar 2006 (21.02.2006)
`7. September 2006 (07.09.2006)
`
`DE
`EP
`
`(71) Anmelder (ffir alle Bestimmungsstaaten mit Ausnahme
`van US): BASF PLANT SCIENCE [DE/DE]; BPS — A30,
`67056 Ludwigshafen (DE).
`
`(72)
`(75)
`
`Erfinder; und
`(nur fiir US): CIRPUS, Petra
`Erfinder/Anmelder
`[DE/DE]; Landteilstrasse 12, 68163 Mannheim (DE).
`BAUER, Jorg [DE/DE]; Maxburgstrasse 6, 67117 Lim—
`burgerhof (DE). QIU, Xiao [CA/CA]; 403 Kendardine
`Road, Saskatoon, Saskatchewan S7N 3S5 (CA). WU,
`Guohai
`[CA/CA]; 2103 Kendardine Road, Saskatoon,
`Saskatchewan S7N 3S5 (CA). CHENG, Bifang [CA/CA];
`Pbi, 110 Gymnasium Road, Saskatoon, Saskatchewan
`S7N 0W9 (CA). TRUKSA, Martin [CA/CA]; 110 Gym—
`nasium Road, Saskatoon, Saskatchewan S7N 0W9 (CA).
`WETJEN, Ton1 [DE/DE]; Meerwiesenstrasse 21, 68163
`Mannheim (DE).
`
`(74) Anwalt: NEUEFEIND, Regina; Maiwald Patentanwalts
`GmbH, Elisenhof, Elisenstrasse 3, 80335 Miinchen (DE).
`
`(81) Bestimmungsstaaten (soweit nicht anders angegeben, fiir
`jede verfiigbare nationale Schutzrechtsart): AE, AG, AL,
`AM, AT, AU, AZ, BA, BB, BG, BR, BW, BY, BZ, CA, CH,
`CN, CO, CR, CU, CZ, DE, DK, DM, DZ, EC, EE, EG, ES,
`FT, GB, GD, GE, GH, GM, GT, HN, HR, HU, ID, IL, IN,
`IS, JP, KE, KG, KM, KN, KP, KR, KZ, LA, LC, LK, LR,
`LS, LT, LU, LV, LY, MA, MD, MG, MK, MN, MW, MX,
`MY, MZ, NA, NG, NI, NO, NZ, OM, PG, PH, PL, PT, RO,
`RS, RU, SC, SD, SE, SG, SK, SL, SM, SV, SY, TJ, TM,
`TN, TR, TT, TZ, UA, UG, US, UZ, VC, VN, ZA, ZM, ZW.
`
`(84) Bestimmungsstaaten (soweit nicht anders angegeben, fiir
`jede verffigbare regionale Schutzrechtsan): ARIPO (BW,
`GH, GM, KE, LS, MW, MZ, NA, SD, SL, SZ, TZ, UG,
`ZM, ZW), eurasisches (AM, AZ, BY, KG, KZ, MD, RU,
`TJ, TM), europ’ajsches (AT, BE, BG, CH, CY, CZ, DE, DK,
`EE, ES, FT, FR, GB, GR, HU, IE, IS, IT, LT, LU, LV, MC,
`NL, PL, PT, RO, SE, SI, SK, TR), OAPI (BF, BJ, CF, CG,
`CI, CM, GA, GN, GQ, GW, ML, MR, NE, SN, TD, TG).
`Veroifentlicht:
`mit internationalem Recherchenbericht
`
`var Ablauf der fiir Anderungen der Anspriiche geltenden
`Frist; Verc’iflentlichung wird wiederholt, falls Anderungen
`eintreflen
`mit dem Sequenzprotokollteil der Beschreibung in elektro—
`nischer Form getrennt verc’iflentlicht; aquntrag mm In—
`ternationalen Biiro erha‘ltlich
`
`Zur Erkla'rung der Zweibuchstaben—Codes und der anderen Ab—
`kiirzungen wird auf die Erkla‘rungen (”Guidance Notes on C0—
`des and Abbreviations ”) am Anfangjeder reguldren Ausgabe der
`PCT—Gazette verwiesen.
`
`(54) Title: METHOD FOR PRODUCING POLYUNSATURATED FATTY ACIDS
`
`(54) Bezeichnung: VERFAHREN ZUR HERSTELLUNG VON MEHRFACH UNGESATTIGTEN FETTSAUREN
`
`(57) Abstract: The invention relates to a method for producing eicosapentanoic acid, docosapentanoic acid and/or docohexanoic
`acid in transgenic plants. According to said method, the plant is provided with at least one nucleic acid sequence coding for a
`polypetide with a A6 desaturase activity, at least one nucleic acid sequence coding for a polypeptide with a A6 elongase activity, at
`H least one nucleic acid sequence coding for a polypeptide with a A5 desaturase activity, and at least one nucleic acid sequence coding
`for a polypeptide with a A5 elongase activity, the nucleic acid sequence coding for a polypeptide with a A5 elongase activity being
`modified in relation to the nucleic acid sequence in the organism from which the sequence originates, such that it is adapted to the
`[\ codon use in at least one type of plant. For the production of docosahexanoic acid, at least one nucleic acid sequence coding for a
`w polypeptide with a A4 desaturase activity is also introduced into the plant.
`63
`a (57) Zusammenfassung: Die vorliegende Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung von Eicosapentaens'aure, Docosapenta—
`c ens'aure und/oder Docosahexaens'aure in transgenen Pflanzen, indem in der Pflanze bereitgestellt werden mindestens eine Nukleins'au—
`I: resequenz, welche fiir ein Polypeptid mit einer A6—Desaturase—Aktivit'at kodiert; mindestens eine Nukleins'auresequenz, welche fiir
`c ein Polypeptid mit einer A6—Elongase—Aktivit'at kodiert; mindestens eine Nukleins'auresequenz, welche fur ein Polypeptid mit einer
`c A5—Desaturase—Aktivit'at kodiert; und mindestens eine Nukleins'auresequenz, welche fiir ein Polypeptid mit einer A5—Elongase—Ak—
`N tivit'at kodiert, wobei die Nukleins'auresequenz, welche fiir ein Polypeptid mit einer A5—Elongase—Aktivit'at kodiert, gegeniiber der
`Nukleins'auresequenz in dem Organismus, aus dem die Sequenz stammt, dadurch veréindert ist, dass sie an die Kodonverwendung
`in einer oder mehreren Pflanzenarten angepasst ist. Fiir die Herstellung von Docosahexaens'aure wird zus'atzlich eine oder mehrere
`Nukleins'auresequenzen, die fiir ein Polypeptid mit einer A4—Desaturase—Aktivit'at kodiert, in die Pflanze eingebracht.
`
`CSIRO Exhibit 1003
`CSIRO Exhibit 1003
`
`

`

`WO 2007/096387
`
`PCT/EP2007/051675
`
`Verfahren zur Herstellung V0n mehrfach ungeséittigten Fettséiuren
`
`Die vorliegende Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung V0n Eicosapentaenséiure,
`
`Docosapentaenséiure und/oder Docosahexaenséiure in transgenen Pflanzen, indem in der
`
`Pflanze bereitgestellt werden mindestens eine Nukleinséiuresequenz, welche fiir ein
`
`Polypeptid mit einer A6-Desaturase-Aktivitéit kodiert; mindestens eine Nukleinséiuresequenz,
`
`welche fiir ein Polypeptid mit einer A6-E10ngase-Aktivitét kodiert; mindestens eine
`
`Nukleinséiuresequenz, welche fiir ein Polypeptid mit einer A5 -Desaturase-Aktivitéit kodiert;
`
`und mindestens eine Nukleinséiuresequenz, welche fiir ein Polypeptid mit einer A5 -Elongase-
`
`Aktivitéit kodiert,
`
`wobei die Nukleinséiuresequenz, welche fiir ein Polypeptid mit einer A5-Elongase-Aktivitéit
`
`kodiert, gegenfiber der Nukleinséiuresequenz in dem Organismus, aus dem die Sequenz
`
`stamnit, dadurch veréindert ist, dass sie an die Kodonverwendung in einer Oder mehreren
`
`Pflanzenarten angepasst ist.
`
`10
`
`15
`
`In einer bevorzugten Ausfiihrungsform werden zuséitzlich weitere Nukleinséiuresequenzen, die
`
`fiir ein Polypeptid mit der Aktivitéit einer oo3-Desaturase und/oder einer A4-Desaturase
`
`20
`
`kodieren, in der Pflanze bereitgestellt.
`
`In einer weiteren bevorzugten Ausfiihrungsforni werden weitere Nukleinséiuresequenzen, die
`
`fiir Acyl-COA-Dehydr0genase(n), Acyl-ACP(= acyl carrier protein)—Desaturase(n), Acyl—
`
`ACP—Thioesterase(n), Fettséiure—Acyl—Transferase(n), Acyl-COA:Lysophospholipid-
`
`25
`
`Acyltransferase(n), Fettséiure—Synthase(n), Fettséiure—Hydroxylase(n), Acetyl-Coenzym A—
`
`Carboxylase(n), Acyl—Coenzym A—Oxidase(n), Fettséiure—Desaturase(n), Fettséiure—
`
`Acetylenasen, Lipoxygenasen, Triacylglycerol—Lipasen, Allenoxid—Synthasen,
`
`Hydroperoxid—Lyasen Oder Fettséiure—Elongase(n) kodieren, in der Pflanze bereitgestellt.
`
`CSIRO Exhibit 1003
`CSIRO Exhibit 1003
`
`

`

`WO 2007/096387
`
`PCT/EP2007/051675
`
`Die Erfindung betrifft weiterhin rekombinante Nukleinséiuremolekiile, umfassend mindestens
`
`eine Nukleinséiuresequenz, die fiir ein Polypeptid mit einer A6-Desaturase-Aktivitéit kodiert;
`
`mindestens eine Nukleinséiuresequenz, die fiir ein Polypeptid mit einer A5 -Desaturase-
`
`Aktivitéit kodiert; mindestens eine Nukleinséiuresequenz, die fiir ein Polypeptid mit einer A6-
`
`Elongase-Aktivitéit kodiert; und mindestens eine Nukleinséiuresequenz, die fiir ein Polypeptid
`
`mit einer A5 -E10ngase-Aktivitéit kodiert und die gegeniiber der Nukleinséiuresequenz in dem
`
`Organismus, aus dem die Sequenz stammt, dadurch veréindert ist, dass sie an die
`
`Kodonverwendung in einer Oder mehreren Pflanzenarten angepasst ist.
`
`Ein weiterer Teil der Erfindung betrifft Ole, Lipide und/oder Fettséiuren, die nach dem
`
`erfindungsgeméifien Verfahren hergestellt wurden, und deren Verwendung.
`
`SchlieBlich betrifft die Erfindung auch transgene Pflanzen, die nach dem erfindungsgeméifien
`
`Verfahren hergestellt wurden Oder die ein erfindungsgeméiBes rekombinantes Nukleinséiure-
`
`molekiil enthalten, und deren Verwendung als Nahrungs— Oder Futtermittel.
`
`10
`
`15
`
`Die Lipidsynthese léisst sich in zwei Abschnitte unterteilen: die Synthese V0n Fettséiuren und
`
`ihre Bindung an sn-Glycerin-3-Ph0sphat sowie die Addition Oder Modifikation einer polaren
`
`20
`
`Kopfgruppe. Ubliche Lipide, die in Membranen verwendet werden, umfassen Phospholipide,
`
`Glycolipide, Sphingolipide und Phosphoglyceride. Die Fettséiuresynthese beginnt mit der
`
`Umwandlung V0n Acetyl-COA in Malonyl-COA durch die Acetyl-CoA-Carboxylase Oder in
`
`Acetyl-ACP durch die Acetyltransacylase. Nach einer Kondensationsreaktion bilden diese
`
`beiden Produktmolekiile zusammen Acetoacetyl-ACP, das fiber eine Reihe V0n Konden-
`
`25
`
`sations—, Reduktions— und Dehydratisierungsreaktionen umgewandelt Wird, so dass ein
`
`geséittigtes Fettséiuremolekiil mit der gewiinschten Kettenléinge erhalten Wird. Die Produktion
`
`der ungeséittigten Fettséiuren aus diesen Molekiilen wird durch spezifische Desaturasen
`
`katalysiert, und zwar entweder aerob mittels molekularem Sauerstoff Oder anaerob (bezfiglich
`
`CSIRO Exhibit 1003
`CSIRO Exhibit 1003
`
`

`

`WO 2007/096387
`
`PCT/EP2007/051675
`
`der Fettsauresynthese in Mikroorganismen siehe F.C. Neidhardt et al. (1996) E. coli und
`
`Salmonella. ASM Press: Washington, DC, S. 612-636 und darin enthaltene Literaturstellen;
`
`Lengeler et a1. (Hrsgb.) (1999) Biology of Procaryotes. Thieme: Stuttgart, New York, und die
`
`enthaltene Literaturstellen, sowie Magnuson, K., et a1. (1993) Microbiological Reviews
`
`57:522-542 und die enthaltenen Literaturstellen). Die so hergestellten an Phospholipide
`
`gebundenen Fettsauren mussen anschlieBend fur die weiteren Elongationen aus den
`
`Phospholipiden wieder in den FettsaureCoA-Ester-Pool uberfiihrt werden. Dies ermoglichen
`
`Acyl-CoA:Lysophospholipid-Acyltransferasen. Weiterhin konnen diese Enzyme die
`
`elongierten Fettsauren wieder von den CoA-Estern auf die Phospholipide ubertragen. Diese
`
`Reaktionsabfolge kann gegebenenfalls mehrfach durchlaufen werden.
`
`Ferner mussen Fettsauren anschlieBend an verschiedene Modifikationsorte transportiert und
`
`in das Triacylglycerin-Speicherlipid eingebaut werden. Ein weiterer wichtiger Schritt bei der
`
`Lipidsynthese ist der Transfer von Fettsauren auf die polaren Kopfgruppen, beispielsweise
`
`durch Glycerin-Fettsaure-Acyltransferase (siehe Frentzen, 1998, Lipid, 100(4-5): 161-166).
`
`Eine Ubersicht uber die Pflanzen-Fettsaurebiosynthese, Desaturierung, den Lipidstoffwechsel
`
`und Membrantransport von fetthaltigen Verbindungen, die Betaoxidation,
`
`Fettsauremodifikation und Cofaktoren, Triacylglycerin-Speicherung und —Assemblierung
`
`geben einschlieBlich der Literaturstellen die folgenden Artikel: Kinney (1997) Genetic
`
`Engeneering, Hrsgb.: JK Setlow, 19: 149-166; Ohlrogge und Browse (1995) Plant Cell 7:957-
`
`970; Shanklin und Cahoon (1998) Annu. ReV. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 49:611-641;
`
`Voelker (1996) Genetic Engeneering, Hrsgb.: JK Setlow, 18: 1 1 1-13; Gerhardt (1992) Prog.
`
`Lipid R. 31:397-417; Guhnemann-Schafer & Kindl (1995) Biochim. Biophys Acta 1256:181-
`
`186; Kunau et a1. (1995) Prog. Lipid Res. 34:267-342; Stymne et a1. (1993) in: Biochemistry
`
`and Molecular Biology of Membrane and Storage Lipids of Plants, Hrsgb.: Murata und
`
`SomerVille, RockVille, American Society of Plant Physiologists, 150-158; Murphy & Ross
`
`(1998) Plant Journal. 13(1):1-16.
`
`10
`
`15
`
`20
`
`25
`
`CSIRO Exhibit 1003
`CSIRO Exhibit 1003
`
`

`

`WO 2007/096387
`
`PCT/EP2007/051675
`
`Die rnehrfach ungeséittigten Fettséiuren kfinnen entsprechend ihrem Desaturierungsmuster in
`
`zwei groBe Klassen, die 03-6- und die oa-3-Fettséiuren, eingeteilt werden, die metabolisch und
`
`filnktionell unterschiedliche AktiVitéiten haben.
`
`1m Folgenden werden mehrfach ungeséittigte Fettséiuren als PUFA, PUFAs, LCPUFA Oder
`
`LCPUFAs bezeichnet (poly finsaturated _fatty 2_1cids, PUFA, mehrfach ungeséittigte Fettséiuren;
`
`long chain p_01y finsaturated fatty acids, LCPUFA, langkettige mehrfach ungeséittigte
`
`Fettséiuren).
`
`A1s Ausgangsstoff fiir den oa-6-St0ffwechse1weg fiJngiert die Fettséiure Linolséiure (18:2A9’12),
`
`Wéihrend der oa-3-Weg fiber Linolenséiure (18:3A9’12’15) abléiuft. Linolenséiure Wird dabei durch
`
`die AktiVitéit einer oa-3-Desaturase aus Linolséiure gebildet (Tocher et a1. (1998) Prog. Lipid
`
`Res. 37: 73-117 ; Domergue et a1. (2002) Eur. J. Biochem. 269: 4105-4113).
`
`10
`
`15
`
`Séiugetiere und damit auch der Mensch verfiigen fiber keine entsprechende Desaturaseaktivitéit
`
`(A-12- und oa-3-Desaturase) zur Bildung dieser Ausgangsstoffe und mfissen daher diese
`
`Fettséiuren (essentielle Fettséiuren) fiber die Nahrung aufnehmen. Uber eine Abfolge V0n
`
`Desaturase- und Elongase-Reaktionen werden dann aus diesen Vorstufen die physiologisch
`
`20
`
`Wichtigen mehrfach ungeséittigten Fettséiuren Arachidonséiure (= ARA, 20:4A5’8’11’14), eine oa-
`
`6-Fettséiure und die beiden oa-3-Fetts'auren Eicosapentaen- (= EPA, 20:5A5’8’11’14’17) und
`
`Docosahexaenséiure (DHA, 22:6A4’7’10’13’17’19) synthetisiert.
`
`Die Verléingerung V0n Fettséiuren durch Elongasen um 2 bzw. 4 C-Atome ist ffir die
`
`25
`
`Produktion V0n C20- bzw. ng-PUFAs V0n entscheidender Bedeutung. Dieser Prozess verléiuft
`
`fiber 4 Stufen. Den ersten Schritt stellt die Kondensation V0n Malonyl-COA an das Fettséiure-
`
`Acyl-COA durch die Ketoacyl-CoA-Synthase (KCS, im weiteren Text als Elongase
`
`bezeichnet) dar. Es folgt dann ein Reduktionsschritt (Ketoacyl-CoA-Reduktase, KCR), ein
`
`CSIRO Exhibit 1003
`CSIRO Exhibit 1003
`
`

`

`WO 2007/096387
`
`PCT/EP2007/051675
`
`Dehydratationsschritt (Dehydratase) und ein abschlieBender Reduktionsschritt (Enoyl-COA-
`
`Reduktase). Es wurde postuliert, dass die AktiVitat der Elongase die Spezifitat und
`
`Geschwindigkeit des gesamten Prozesses beeinflusst (Millar and Kunst (1997) Plant Journal
`
`122121-131).
`
`Fiir Fettsauren und Triacylglyceride besteht eine Vielzahl von Anwendungen in der Lebens—
`
`mittelindustrie, der Tierernahrung, der Kosmetik und im Pharmabereich. Je nachdem, 0b es
`
`sich um freie gesattigte und ungesattigte Fettsauren oder um Triacylglyceride mit einem
`
`erhéhten Gehalt an gesattigten oder ungesattigten Fettsauren handelt, sind sie fiir die
`
`unterschiedlichsten Anwendungen geeignet. So werden z.B. in der humanen Ernahrung
`
`Lipide mit ungesattigten, speziell mehrfach ungesattigten, Fettsauren bevorzugt. Den
`
`mehrfach ungesattigten 03-3 -Fettsauren Wird dabei ein positiver Effekt auf den
`
`Cholesterinspiegel im Blut und damit auf die Pravention einer Herzerkrankung zuge-
`
`schrieben. Durch Zugabe dieser oa-3-Fettsauren zur Nahrung kann das Risiko einer
`
`Herzerkrankung, eines Schlaganfalls Oder V0n Bluthochdruck deutlich verringert werden
`
`(Shimikawa (2001) World ReV. Nutr. Diet. 88: 100-108).
`
`Auch entziindliche, speziell chronisch entzfindliche, Prozesse im Rahmen immunologischer
`
`Erkrankungen Wie rheumatoider Arthritis lassen sich durch oo-3-Fettsauren positiV
`
`beeinflussen (Calder (2002) Proc. Nutr. Soc. 61: 345-358; Cleland und James (2000)
`
`J. Rheumatol. 27: 2305-2307). Sie werden deshalb Lebensmitteln, speziell diatetischen
`
`Lebensmitteln, zugegeben Oder finden in Medikamenten Anwendung. oo-6-Fettsauren Wie
`
`Arachidonsaure fiben bei diesen rheumatischen Erkrankungen eher einen negativen Effekt
`
`3.118 .
`
`03-3- und oa-6-Fettsauren sind Vorlaufer V0n Gewebshormonen, den sogenannten
`
`Eicosanoiden Wie den Prostaglandinen, die sich von der Dihomo-y-linolensaure,
`
`der Arachidonsaure und der Eicosapentaensaure ableiten, und den Thromboxanen und
`
`10
`
`15
`
`20
`
`25
`
`CSIRO Exhibit 1003
`CSIRO Exhibit 1003
`
`

`

`WO 2007/096387
`
`PCT/EP2007/051675
`
`Leukotrienen, die sich Von der Arachidonséiure und der Eicosapentaenséiure ableiten.
`
`Eicosanoide (sog. PGz-Serie), die aus w-6-Fettséiuren gebildet werden, férdern in der Regel
`
`Entzfindungsreaktionen, wéihrend Eicosanoide (sog. PG3-Serie) aus oa-3-Fettséiuren geringe
`
`Oder keine entziindungsférdernde Wirkung haben.
`
`Mehrfach ungeséittigte langkettige oa-3-Fettséiuren Wie Eicosapentaenséiure (= EPA,
`
`C2025A5’8’11’14’17) Oder Docosahexaenséiure (= DHA, C2226A4’7’10’13’16’19) sind wichtige
`
`Komponenten der menschlichen Ern'eihrung aufgrund ihrer verschiedenen Rollen in der
`
`Gesundheit, die Aspekte wie die Entwicklung des kindlichen Gehirns, die Funktionalitét des
`
`Auges, die Synthese VOl’l Hormonen und anderer Signalstoffe, sowie die Vorbeugung von
`
`Herz-Kreislauf—Beschwerden, Krebs und Diabetes umfassen (Poulos, A (1995) Lipids 30: 1-
`
`14; Horrocks, LA und Yeo YK (1999) Pharmacol Res 402211-225).
`
`Aufgrund der heute fiblichen Zusarnmensetzung der menschlichen Nahrung ist ein Zusatz VOl’l
`
`mehrfach ungeséittigten 03-3 -Fettséiuren, die bevorzugt in Fischélen vorkommen, zur Nahrung
`
`besonders Wichtig. So werden beispielsweise mehrfach ungeséittigte Fettséiuren wie Docosa-
`
`hexaenséiure (= DHA, C2226A4’7’10’13’16’19) oder Eisosapentaenséiure (= EPA, C2025A5’8’11’14’17)
`
`der Babynahrung zur Erhéhung des Néihrwertes zugesetzt. Es besteht aus diesem Grund ein
`
`Bedarf an der Produktion mehrfach ungeséittigter langkettiger Fettséiuren.
`
`Hauptséichlich werden die verschiedenen Fettséiuren und Triglyceride aus Mikroorganismen
`
`Wie Mortierella Oder Schizochytrium Oder aus Cl—produzierenden Pflanzen Wie Soj a, Raps
`
`und Algen Wie Crypthecodinium Oder Phaeodactylurn und weiteren gewonnen, wobei sie in
`
`der Regel in Form ihrer Triacylglyceride (= Triglyceride = Triglycerole) anfallen. Sie kénnen
`
`aber auch aus Tieren wie z.B. Fischen gewonnen werden. Die freien Fettséiuren werden
`
`vorteilhaft durch Verseifung der Triacylglyceride hergestellt. Sehr langkettige mehrfach
`
`ungeséittigte Fettséiuren Wie DHA, EPA, Arachidonséiure (ARA, C2024A5’8’11’14), Dihomo-y-
`
`linolenséiure (DHGL, C2023A8’11’14) Oder Docosapentaenséiure (DPA, C2225A7’10’13’16’19)werden
`
`10
`
`15
`
`20
`
`25
`
`CSIRO Exhibit 1003
`CSIRO Exhibit 1003
`
`

`

`WO 2007/096387
`
`PCT/EP2007/051675
`
`in 0lfruchtpflanzen Wie Raps, Soj a, Sonnenblume, Farbersaflor j edoch nicht synthetisiert.
`
`Ubliche natiirliche Quellen fiir diese Fettsauren sind Fische Wie Hering, Lachs, Sardine,
`
`Goldbarsch, Aal, Karpfen, Forelle, Heilbutt, Makrele, Zander oder Thunfisch oder Algen.
`
`Aufgrund der positiven Eigenschaften der mehrfach ungesattigten Fettsauren hat es in der
`
`Vergangenheit nicht an Ansatzen gefehlt, Gene, die an der Synthese dieser Fettsauren bzw.
`
`Triglyceride beteiligt sind, fiir die Herstellung von 0len in verschiedenen Organismen
`
`mit geandertem Gehalt an ungesattigten Fettsauren verfiigbar zu machen. So Wird in
`
`W0 91/ 13972 und seinem US—Aquivalent eine A—9—Desaturase beschrieben. In
`
`10
`
`W0 93/11245 Wird eine A—15—Desaturase und in WO 94/11516 eine A—12—Desaturase
`
`beansprucht. Weitere Desaturasen werden beispielsweise in EP—A—0 550 162, WO 94/18337,
`
`W0 97/30582, W0 97/21340, W0 95/18222, EP—A—0 794 250, Stukey et al. (1990) J. Biol.
`
`Chem, 265: 20144-20149, Wada et al. (1990) Nature 347: 200—203 oder Huang et al. (1999)
`
`Lipids 34: 649—659 beschrieben. Die biochemische Charakterisierung der verschiedenen
`
`Desaturasen ist jedoch bisher nur unzureichend erfolgt, da die Enzyme als membran-
`
`gebundene Proteine nur sehr schwer zu isolieren und zu charakterisieren sind (McKeon et al.
`
`(1981) Methods in Enzymol. 71: 12141—12147, Wang et al. (1988) Plant Physiol. Biochem.,
`
`26: 777—792).
`
`In der Regel erfolgt die Charakterisierung membrangebundener Desaturasen durch Ein-
`
`bringung in einen geeigneten Organismus, der anschlieBend auf EnzymaktiVitat mittels
`
`Edukt- und Produktanalyse untersucht Wird. A—6—Desaturasen werden in W0 93/06712,
`
`US 5,614,393, W0 96/21022, W0 00/21557 und W0 99/27111 beschrieben. Die Anwendung
`
`dieses Enzyms zur Produktion von Fettsauren in transgenen Organismen Wird in
`
`W0 98/46763, W0 98/46764 und W0 98/46765 beschrieben. Die Expression verschiedener
`
`Desaturasen und die Bildung mehrfach ungesattigter Fettsauren Wird auch in W0 99/64616
`
`oder W0 98/46776 beschrieben und beansprucht. Bzgl. der EffektiVitat der Expression von
`
`Desaturasen und ihrem Einfluss auf die Bildung mehrfach ungesattigter Fettsauren ist
`
`15
`
`20
`
`25
`
`CSIRO Exhibit 1003
`CSIRO Exhibit 1003
`
`

`

`WO 2007/096387
`
`PCT/EP2007/051675
`
`anzumerken, dass durch Expression einer einzelnen Desaturase Wie bisher beschrieben
`
`lediglich geringe Gehalte an ungesattigten Fettsauren/Lipiden Wie z.B. y-Linolensaure und
`
`Stearidonsaure erreicht wurden.
`
`In der Vergangenheit wurden zahlreiche Versuche unternommen, Elongase-Gene zu erhalten.
`
`Millar and Kunst (1997) Plant Journal 12: 121-131 und Millar et al. (1999) Plant Cell 11:825-
`
`838 beschreiben die Charakterisierung von pflanzlichen Elongasen zur Synthese von einfach
`
`ungesattigten langkettigen Fettsauren (C22: 1) bzw. zur Synthese von sehr langkettigen
`
`Fettsauren fiir die Wachsbildung in Pflanzen (ng-C32). Beschreibungen zur Synthese von
`
`Arachidonsaure und EPA finden sich beispielsweise in WO 01/59128, W0 00/ 12720,
`
`WO 02/077213 und WO 02/08401. Die Synthese von mehrfach ungesattigter C24-Fettsauren
`
`ist beispielsweise in Tvrdik et al. (2000) J. Cell Biol. 149: 707-718 oder in WO 02/44320
`
`beschrieben.
`
`Besonders geeignete Mikroorganismen zur Herstellung von PUFAs sind Mikroalgen Wie
`
`Phaeodactylum tricornutum, Porphiridium-Arten, Thraustochytrien-Arten, Schizochytrien-
`
`Arten oder Crypthecodinium—Arten, Ciliaten, Wie Stylonychia oder Colpidium, Pilze, Wie
`
`Mortierella, Entomophthora oder Mucor und/oder Moose Wie Physcomitrella, Ceratodon und
`
`Marchantia (R. Vazhappilly & F. Chen (1998) Botanica Marina 41: 553-558; K. Totani & K.
`
`Oba (1987) Lipids 22: 1060-1062; M. Akimoto et al. (1998) Appl. Biochemistry and
`
`Biotechnology 73: 269-278). Durch Stammselektion ist eine Anzahl von Mutantenstammen
`
`der entsprechenden Mikroorganismen entwickelt worden, die eine Reihe Wfinschenswerter
`
`Verbindungen, einschlieBlich PUFAs, produzieren. Die Mutation und Selektion von Stammen
`
`mit verbesserter Produktion eines bestimmten Molekiils Wie den mehrfach ungesattigten
`
`Fettsauren ist j edoch ein zeitraubendes und schwieriges Verfahren. Mit Hilfe der vorge-
`
`nannten Mikroorganismen lassen sich zudem nur begrenzte Mengen der gewiinschten
`
`mehrfach ungesattigten Fettsauren Wie DPA, EPA oder ARA herstellen, die noch dazu in der
`
`10
`
`15
`
`20
`
`25
`
`CSIRO Exhibit 1003
`CSIRO Exhibit 1003
`
`

`

`WO 2007/096387
`
`PCT/EP2007/051675
`
`Regel a1s Fettsauregemische anfa11en. Deshalb werden, wann immer moglich, gentechno-
`
`logische Verfahren bevorzugt.
`
`Hohere Pflanzen enthalten mehrfach ungesattigte Fettsauren Wie Linolsaure (C 1 8:2) und
`
`Linolensaure (C1823). ARA, EPA und DHA kommen im Samenol hoherer Pflanzen gar nicht
`
`oder nur in Spuren vor (E. Ucciani: Nouveau Dictionnaire des Huiles Végétales. Technique &
`
`Documentation — Lavoisier, 1995. ISBN: 2-7430-0009-0). Es Ware jedoch vorteilhaft, in
`
`hoheren Pflanzen, bevorzugt in Glsaaten Wie Raps, Lein, Sonnenblume und Soj a, LCPUFAs
`
`herzustellen, da auf diese Weise groBe Mengen qualitatiV hochwertiger LCPUFAs fiir die
`
`Lebensmittelindustrie, die Tieremahrung und fiir pharmazeutische Zwecke kostengfinstig
`
`gewonnen werden konnen. Hierzu werden vorteilhafterweise fiber gentechnische Methoden
`
`Gene, die fiir Enzyme der Biosynthese von LCPUFAs kodieren, in Glsaaten eingefiihrt und
`
`exprimiert. Dies sind Gene, die beispielsweise fiir A-6-Desaturasen, A-6-Elongasen, A-5-
`
`Desaturasen oder A-4-Desaturasen kodieren. Diese Gene konnen vorteilhaft aus Mikro-
`
`organismen und niederen Pflanzen isoliert werden, die LCPUFAs herstellen und in den
`
`Membranen oder Triacylglyceriden einbauen. So konnten bereits A-6-Desaturase-Gene aus
`
`dem Moos Physcomitrella patens und A-6-Elongase-Gene aus P. patens und dem Nematoden
`
`C. elegans isoliert werden.
`
`Transgene Pflanzen, die fiir Enzyme der LCPUFA-Biosynthese kodierende Gene enthalten
`
`und exprimieren und a1s Folge dessen LCPUFAs produzieren, wurden beispielsweise in
`
`DE-A-102 19 203 (Verfahren zur Herstellung mehrfach ungesattigter Fettsauren in Pflanzen)
`
`beschrieben. Diese Pflanzen produzieren allerdings LCPUFAs in Mengen, die fiir eine
`
`Aufarbeitung der in den Pflanzen enthaltenen Ole noch weiter optimiert werden miissen. So
`
`betragt der Gehalt von ARA in den in DE-A-102 19 203 beschriebenen Pflanzen 1edig1ich 0,4
`
`bis 2% und der Gehalt von EPA 1edig1ich 0,5 bis 1%, j eweils bezogen auf den Gesamt-
`
`lipidgehalt der Pflanze.
`
`10
`
`15
`
`20
`
`25
`
`CSIRO Exhibit 1003
`CSIRO Exhibit 1003
`
`

`

`WO 2007/096387
`
`PCT/EP2007/051675
`
`10
`
`Um eine Anreicherung der Nahrung und des Futters mit mehrfach ungeséittigten, langkettigen
`
`Fettséiuren zu erméglichen, besteht daher ein groBer Bedarf an einem einfachen, kosten-
`
`giinstigen Verfahren zur Herstellung von mehrfach ungeséittigten, langkettigen Fettséiuren
`
`speziell in pflanzlichen Systemen.
`
`Eine Aufgabe der Erfindung ist es daher, ein Verfahren bereitzustellen, mit dem langkettige,
`
`mehrfach ungeséittigte Fettséiuren, insbesondere Eicosapentaenséiure, Docosapentaenséiure
`
`und/Oder Docosahexaenséiure, in transgenen Pflanzen in groBer Menge preiswert hergestellt
`
`werden kénnen.
`
`Es wurde nun fiberraschenderweise herausgefimden, dass durch die Expression einer
`
`optimierten AS-Elongase-Sequenz in transgenen Pflanzen die Ausbeute an langkettigen,
`
`mehrfach ungeséittigten Fettséiuren, insbesondere Eicosapentaenséiure, Docosapentaenséiure
`
`und/oder Docosahexaenséiure, gesteigert werden kann.
`
`10
`
`15
`
`Die durch das erfindungsgeméifie Verfahren hergestellten PUFAs umfassen eine Gruppe von
`
`Molekiilen, die héhere Tiere nicht mehr synthetisieren kennen und somit aufnehmen mfissen
`
`Oder die héhere Tiere nicht mehr ausreichend selbst herstellen kennen und somit zuséitzlich
`
`aufnehmen miissen, obwohl sie leicht VOl’l anderen Organismen, Wie Bakterien, synthetisiert
`
`20
`
`werden kennen.
`
`Entsprechend Wird die Aufgabe der Erfindung gelést durch das erfindungsgeméifie Verfahren
`
`zur Herstellung von Eicosapentaenséiure, Docosapentaenséiure und/oder Docosahexaenséiure
`
`in einer transgenen Pflanze, umfassend das Bereitstellen in der Pflanze VOl’l mindestens einer
`
`25
`
`Nukleinséiuresequenz, welche fiir ein Polypeptid mit einer A6-Desaturase-Aktivitéit kodiert;
`
`mindestens einer Nukleinséiuresequenz, welche fiir ein Polypeptid mit einer A6-Elongase-
`
`Aktivitéit kodiert; mindestens einer Nukleinséiuresequenz, welche fiir ein Polypeptid mit einer
`
`CSIRO Exhibit 1003
`CSIRO Exhibit 1003
`
`

`

`WO 2007/096387
`
`PCT/EP2007/051675
`
`11
`
`AS-Desaturase-Aktivitéit kodiert; und mindestens einer Nukleinséiuresequenz, welche fiir ein
`
`Polypeptid mit einer AS-Elongase-Aktivitéit kodiert,
`
`wobei die Nukleinséiuresequenz, welche fiir ein Polypeptid mit einer AS-Elongase-Aktivitéit
`
`kodiert, gegeniiber der Nukleinséiuresequenz in dem Organismus, aus dem die Sequenz
`
`stammt, dadurch veréindert ist, dass sie an die Kodonverwendung in einer oder mehreren
`
`Pflanzenarten angepasst ist. Fiir die Produktion von DHA muss desweiteren mindestens eine
`
`Nukleinséiuresequenz, welche fiir ein Polypeptid mit einer A4-Desaturase-Aktivitéit kodiert, in
`
`der Pflanze bereitgestellt werden.
`
`Das "Bereitstellen in der Pflanze" bedeutet im Sinne der vorliegenden Erfindung, dass
`
`MaBnahnien getroffen werden, so dass die Nukleinséiuresequenzen kodierend fiir ein
`
`Polypeptid mit einer A6-Desaturase-Aktivitéit, ein Polypeptid mit einer A6-Elongase-
`
`Aktivitéit, ein Polypeptid mit einer A5 -Desaturase-Aktivitéit und ein Polypeptid mit einer A5-
`
`Elongase-Aktivitéit zusammen in einer Pflanze vorliegen. Das "Bereitstellen in der Pflanze"
`
`umfasst somit das Einbringen der Nukleinséiuresequenzen in die Pflanze sowohl durch Trans-
`
`formation einer Pflanze mit einem oder mehreren rekombinanten Nukleinséiureniolekiilen, die
`
`die genannten Nukleinséiuresequenzen enthalten, als auch durch Verkreuzung von geeigneten
`
`Elternpflanzen, die eine oder mehrere der genannten Nukleinséiuresequenzen enthalten.
`
`Die Nukleinséiuresequenz, die fiir ein Polypeptid mit einer AS-Elongase-Aktivitéit kodiert, ist
`
`erfindungsgeniéiB gegeniiber der Nukleinséiuresequenz in dem Organismus, aus dem die
`
`Sequenz stammt, dadurch veréindert, dass sie an die Kodonverwendung in einer oder
`
`mehreren Pflanzenarten angepasst ist. Dies bedeutet, dass die Nukleinséiuresequenz gezielt fiir
`
`die Zwecke der Erfindung optimiert wurde, ohne dass dadurch die von der
`
`Nukleinséiuresequenz kodierte Aminoséiuresequenz veréindert wurde.
`
`Der genetische Code ist redundant, da er 61 Kodons verwendet, um 20 Aminoséiuren zu
`
`spezifizieren. Daher werden die meisten der 20 proteinogenen Aminoséiuren von mehreren
`
`10
`
`15
`
`20
`
`25
`
`CSIRO Exhibit 1003
`CSIRO Exhibit 1003
`
`

`

`WO 2007/096387
`
`PCT/EP2007/051675
`
`12
`
`Tripletts (Kodons) kodiert. Die synonymen Kodons, die eine einzelne Aminosaure spezi-
`
`fizieren, werden in einem bestimmten Organismus jedoch nicht mit gleicher Haufigkeit
`
`verwendet, sondern es gibt bevorzugte Kodons, die haufig verwendet werden und Kodons, die
`
`seltener verwendet werden. Diese Unterschiede in der Kodonverwendung werden zuriick-
`
`5
`
`gefiihrt auf selektive evolutionare Driicke und vor allem die Effizienz der Translation. Ein
`
`Grund fiir die geringere Translationseffizienz von selten auftretenden Kodons konnte darin
`
`liegen, dass die entsprechenden Aminoacyl-tRNA-Pools erschopft werden und damit nicht
`
`mehr zur Proteinsynthese zur Verfiigung stehen.
`
`10
`
`AuBerdeni bevorzugen unterschiedliche Organismen unterschiedliche Kodons. Daher lauft
`
`beispielsweise die Expression einer rekombinanten DNA, die aus einer Séiugerzelle stammt,
`
`in E. coli-Zellen haufig nur suboptimal ab. Deshalb kann der Austausch selten verwendeter
`
`Kodons gegen haufig verwendete Kodons in manchen Fallen die Expression erhohen. Ohne
`
`an eine Hypothese gebunden sein zu wollen, wird angenommen, dass die kodonoptimierten
`
`15
`
`DNA-Sequenzen eine effizientere Translation ermoglichen und die daraus gebildeten mRNAs
`
`moglicherweise eine hohere Halbwertszeit in der Zelle besitzen und daher haufiger fiir die
`
`Translation zur Verfiigung stehen. Aus dem vorstehend gesagten folgt, dass eine
`
`Kodonoptimierung nur dann notig ist, wenn der Organismus, in dem die Nukleinsauresequenz
`
`exprimiert werden soll, ein anderer ist als der Organismus, aus dem die Nukleinsauresequenz
`
`20
`
`urspriinglich stammt.
`
`Fiir Viele Organismen, von denen die DNA-Sequenz einer groBeren Zahl von Genen bekannt
`
`ist, gibt es Tabellen, denen man die Haufigkeit der Verwendung bestimmter Kodons in dem
`
`j eweiligen Organismus entnehmen kann. Mit Hilfe dieser Tabellen lassen sich Protein-
`
`25
`
`sequenzen mit relatiV groBer Genauigkeit in eine DNA-Sequenz zuriickiibersetzen, die die
`
`im jeweiligen Organismus bevorzugten Kodons fiir die verschiedenen Aminosauren des
`
`Proteins enthalt. Tabellen zur Kodonverwendung konnen u.a. unter der folgenden Internet-
`
`Adresse aufgefunden werden:
`
`CSIRO Exhibit 1003
`CSIRO Exhibit 1003
`
`

`

`WO 2007/096387
`
`PCT/EP2007/051675
`
`13
`
`http_://www.kazusa.or.jp_/Kodon/E.html. Dariiber hinaus bieten mehrere Firmen Software fiir
`
`die Genoptimierung an, wie z.B. die Firma Entelechon (Software Leto) oder die Firma
`
`Geneart (Software GeneOptimizer).
`
`Die Anpassung der Sequenzen an die Kodonverwendung in einem bestimmten Organismus
`
`kar1r1 ur1ter Zuhilfenahme verschiederier Kriterien erfolgen. Zum eir1er1 kar1r1 fiir eine
`
`bestimmte Aminosaure immer das am haufigsten im ausgewahlten Organismus vorkommende
`
`Kodon verwendet werden, zum anderen kar1r1 aber auch die natiirliche Frequenz der ver-
`
`schiedenen Kodons berficksichtigt werden, so dass alle Kodons fiir eine bestimmte
`
`Aminosaure entsprechend ihrer natiirlichen Haufigkeit in die optimierte Sequenz eingebaut
`
`werden. Dabei kar1r1 die Auswahl, an welcher Position welches Basen-Triplett verwendet
`
`wird, zufallig stattf1r1der1. ErfindungsgemaB wurde die DNA-Sequenz unter Berficksichtigung
`
`der natiirlichen Haufigkeit einzelner Kodons angepasst, wobei die Verwendung des am
`
`haufigsten im ausgewahlten Organismus vorkommenden Kodons ebenfalls geeignet ist.
`
`Besonders bevorzugt ist eine Nukleinsauresequenz aus Ostreococcus tauri, die fiir
`
`eir1 Polypeptid mit einer A5-Elor1gase-Aktivitatkodiert, wie beispielsweise das in SEQ ID No.
`
`110 dargestellte Polypeptid, zumindest an die Kodonverwendung ir1 Raps, Soj a und/oder Lein
`
`angepasst. Bei der urspri'mglich aus Ostreococcus tauri stammenden Nukleinsauresequenz
`
`handelt es sich bevorzugt um die in SEQ ID No. 109 )dargestellte Sequenz. Die fiir

This document is available on Docket Alarm but you must sign up to view it.


Or .

Accessing this document will incur an additional charge of $.

After purchase, you can access this document again without charge.

Accept $ Charge
throbber

Still Working On It

This document is taking longer than usual to download. This can happen if we need to contact the court directly to obtain the document and their servers are running slowly.

Give it another minute or two to complete, and then try the refresh button.

throbber

A few More Minutes ... Still Working

It can take up to 5 minutes for us to download a document if the court servers are running slowly.

Thank you for your continued patience.

This document could not be displayed.

We could not find this document within its docket. Please go back to the docket page and check the link. If that does not work, go back to the docket and refresh it to pull the newest information.

Your account does not support viewing this document.

You need a Paid Account to view this document. Click here to change your account type.

Your account does not support viewing this document.

Set your membership status to view this document.

With a Docket Alarm membership, you'll get a whole lot more, including:

  • Up-to-date information for this case.
  • Email alerts whenever there is an update.
  • Full text search for other cases.
  • Get email alerts whenever a new case matches your search.

Become a Member

One Moment Please

The filing “” is large (MB) and is being downloaded.

Please refresh this page in a few minutes to see if the filing has been downloaded. The filing will also be emailed to you when the download completes.

Your document is on its way!

If you do not receive the document in five minutes, contact support at support@docketalarm.com.

Sealed Document

We are unable to display this document, it may be under a court ordered seal.

If you have proper credentials to access the file, you may proceed directly to the court's system using your government issued username and password.


Access Government Site

We are redirecting you
to a mobile optimized page.





Document Unreadable or Corrupt

Refresh this Document
Go to the Docket

We are unable to display this document.

Refresh this Document
Go to the Docket